Przejdź do zawartości
Merck
Strona głównaAnaliza obrazowania i obrazowanie żywych komórekMarkery i przeciwciała mezenchymalnych komórek macierzystych

Markery i przeciwciała mezenchymalnych komórek macierzystych

Mezenchymalne markery komórek macierzystych

Ogólnie rzecz biorąc,  komórki macierzyste są wyspecjalizowanymi komórkami zdolnymi do samoodnowy poprzez podział komórkowy ze zdolnością do różnicowania się w komórki wieloliniowe.Mezenchymalne komórki macierzyste (MSC) są komórkami macierzystymi tkanek. Są one "multipotencjalne", co oznacza, że mogą różnicować się w więcej niż jeden typ komórek w organizmie.

mezenchymalne komórki macierzyste

Rysunek 1.Schematyczne przedstawienie różnicowania mezenchymalnych komórek macierzystych (MSC) ze szpiku kostnego.

Friedenstein i wsp. po raz pierwszy odkryli MSC w szpiku kostnym 1. Dziesięciolecia badań zapewniły dogłębne zrozumienie tych komórek i zostały zgłoszone z, ale nie tylko, szpiku kostnego 2. Dodatkowo, komórki wykazujące cechy MSC zostały wyizolowane z tkanki tłuszczowej 3,4, płynu owodniowego 5,6, tkanek zęba 7<, endometrium 2./sup>, endometrium 8, krew menstruacyjna 9, krew obwodowa 10, łożysko i błona płodowa 11. Mezenchymalne komórki macierzyste można zdefiniować przez połączenie różnych markerów powierzchniowych, takich jak NT5E/CD73, THY1/ CD90 i ENG/CD105 (Rysunek 2).

Barwienie immunohistochemiczne Endoglin/CD105

Rysunek 2.Barwienie immunohistochemiczne Endoglin/CD105 w ludzkich naczyniach krwionośnych przy użyciu przeciwciała monoklonalnego Anti-ENG (AMAb90925)..

Fibroblasty i komórki tkanki łącznej

Fibroblasty lub komórki tkanki łącznej  (znane również jako komórki zrębu) zapewniają wsparcie i strukturę dla różnych narządów. Między innymi odgrywają one również istotną rolę w produkcji, utrzymaniu i przebudowie macierzy zewnątrzkomórkowej. Rysunek 3 przedstawia immunobarwienie markera fibroblastów HSP47/SerpinH1 w ludzkim przełyku.

Barwienie immunohistochemiczne inhibitora peptydazy serpinowej lub białka szoku cieplnego 47

Rysunek 3.Barwienie immunohistochemiczne inhibitora peptydazy serpinowej lub białka szoku cieplnego 47 w ludzkim przełyku przy użyciu przeciwciała poliklonalnego anty-SERPINH1 (HPA029198)

Chondrocyty i komórki chrząstki

Chondrocyty pochodzą głównie z mezodermy i są jedynymi komórkowymi składnikami normalnej tkanki chrzęstnej. Chondrocyty są odpowiedzialne za syntezę dwóch głównych składników macierzy (kolagenu i proteoglikanów) oraz enzymów degradujących składniki macierzy. Dlatego też chondrocyty odgrywają kluczową rolę w regulacji syntezy i degradacji chrząstki. Różnicowanie MSC w chondrocyty jest regulowane przez czynniki transkrypcyjne, takie jak SOX9.

Adipocyty i komórki białej tkanki tłuszczowej

Adipocyty to wysoce wyspecjalizowane komórki, które odgrywają istotną rolę w wydatkowaniu energii u większości kręgowców. Adipocyty przekształcają nadmiar energii w tłuszcz i odkładają go podczas karmienia, przygotowując się na okresy niedoboru pożywienia. Mają one wyraźną morfologię "pierścienia sygnetowego" zawierającego jedną lub więcej dużych kropelek trójglicerydów (tłuszczu), co odróżnia je od komórek zrębowych/naczyniowych z niedoborem lipidów. Rysunek 4 przedstawia barwienie immunohistochemiczne dla PLN1 (perilipiny 1), która jest markerem adipocytów.

Barwienie immunohistochemiczne ludzkiej piersi dla perilipiny-1

Rysunek 4.Barwienie immunohistochemiczne ludzkiej piersi dla perilipiny-1 przy użyciu przeciwciała poliklonalnego Anti-PLIN1 (HPA024299).

Osteoblasty i komórki kości

Osteoblasty to komórki odpowiedzialne za tworzenie i przebudowę tkanki kostnej. Tworzenie kości (osteogeneza) zachodzi albo z prekursora chrząstki, albo z warstwy osteoblastów na powierzchni kości, tak jak w kościach długich szkieletu. Główną funkcją osteoblastów jest synteza kolagenu typu I i innych wyspecjalizowanych białek macierzy, które służą jako szablon do późniejszego odkładania wapnia. Różnicowanie osteoblastów jest regulowane na przykład przez główny czynnik regulacyjny genu OX/SP7.

Komórki mięśni gładkich, sercowych i szkieletowych

Miocyt jest funkcjonalnym typem komórki tkanki mięśniowej. Istnieją trzy różne typy miocytów o różnych właściwościach, w tym komórki mięśni gładkich, sercowych i szkieletowych. Komórki mięśni gładkich (SMC) tworzą mimowolnie kontrolowane, nieprążkowane mięśnie w ścianach tkanek trzewnych i naczyń krwionośnych. W regulacji ekspresji genów mięśni gładkich pośredniczy miokardyna. Kardiomiocyty, czyli komórki mięśnia sercowego, to mimowolnie kontrolowane, prążkowane komórki ograniczone do serca. Kardiomiocyty są między innymi regulowane przez GATA4 i miokardynę. Komórki mięśni szkieletowych są komórkami mięśni poprzecznie prążkowanych pod dobrowolną kontrolą i są przymocowane do szkieletu za pomocą ścięgien. MyoD1 jest kluczowym regulatorem różnicowania komórek mięśni szkieletowych (prążkowanych). Rysunki 5A-C przedstawiają immunobarwienia ilustrujące specyficzne markery przeciwciał dla każdego typu komórek mięśniowych.

Barwienie immunohistochemiczne komórek mięśni gładkich (SMC)

Rysunek 5A.Barwienie immunohistochemiczne komórek mięśni gładkich (SMC) wykazujące wysoką ekspresję Transgeliny przy użyciu przeciwciała poliklonalnego Anti-TAGLN (HPA019467).

Barwienie immunohistochemiczne komórek mięśnia sercowego

Rysunek 5B.Barwienie immunohistochemiczne komórki mięśnia sercowego wykazujące wysoką ekspresję białka wiążącego kwasy tłuszczowe 3 w ludzkim mięśniu sercowym przy użyciu przeciwciała poliklonalnego Anti-FABP3 (HPA055754)..

Barwienie immunohistochemiczne komórek mięśni szkieletowych (SMC)

Rysunek 5C.Barwienie immunohistochemiczne komórek mięśni szkieletowych (SMC) wykazujące wysoką ekspresję troponiny t typu 1 przy użyciu przeciwciała poliklonalnego anty-TNT1 (HPA058448).

Dostępne markery i przeciwciała mezenchymalnych komórek macierzystych
Loading

* Produkty z ulepszoną walidacją dla wskazanego zastosowania


Referencje

1.
Friedenstein AJ, Chailakhjan RK, Lalykina KS. 1970. THE DEVELOPMENT OF FIBROBLAST COLONIES IN MONOLAYER CULTURES OF GUINEA-PIG BONE MARROW AND SPLEEN CELLS. Cell Prolif. 3(4):393-403. https://doi.org/10.1111/j.1365-2184.1970.tb00347.x
2.
Pittenger MF. 1999. Multilineage Potential of Adult Human Mesenchymal Stem Cells. 284(5411):143-147. https://doi.org/10.1126/science.284.5411.143
3.
Wagner W, Wein F, Seckinger A, Frankhauser M, Wirkner U, Krause U, Blake J, Schwager C, Eckstein V, Ansorge W, et al. 2005. Comparative characteristics of mesenchymal stem cells from human bone marrow, adipose tissue, and umbilical cord blood. Experimental Hematology. 33(11):1402-1416. https://doi.org/10.1016/j.exphem.2005.07.003
4.
Zhang X, Yang M, Lin L, Chen P, Ma KT, Zhou CY, Ao YF. 2006. Runx2 Overexpression Enhances Osteoblastic Differentiation and Mineralization in Adipose - Derived Stem Cells in vitro and in vivo. Calcif Tissue Int. 79(3):169-178. https://doi.org/10.1007/s00223-006-0083-6
5.
in `t Anker PS, Scherjon SA, Kleijburg-van der Keur C, Noort WA, Claas FHJ, Willemze R, Fibbe WE, Kanhai HHH. 2003. Amniotic fluid as a novel source of mesenchymal stem cells for therapeutic transplantation. 102(4):1548-1549. https://doi.org/10.1182/blood-2003-04-1291
6.
Tsai M. Isolation of human multipotent mesenchymal stem cells from second-trimester amniotic fluid using a novel two-stage culture protocol. Human Reproduction. 19(6):1450-1456. https://doi.org/10.1093/humrep/deh279
7.
Huang G, Gronthos S, Shi S. 2009. Mesenchymal Stem Cells Derived from Dental Tissuesvs. Those from Other Sources: Their Biology and Role in Regenerative Medicine. J Dent Res. 88(9):792-806. https://doi.org/10.1177/0022034509340867
8.
Schüring AN, Schulte N, Kelsch R, Röpke A, Kiesel L, Götte M. 2011. Characterization of endometrial mesenchymal stem-like cells obtained by endometrial biopsy during routine diagnostics. Fertility and Sterility. 95(1):423-426. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2010.08.035
9.
Allickson JG. 2011. Recent Studies Assessing the Proliferative Capability of a Novel Adult Stem Cell Identified in Menstrual Blood. TOSCJ. 3(1):4-10. https://doi.org/10.2174/1876893801103010004
10.
Ab Kadir R, Zainal Ariffin SH, Megat Abdul Wahab R, Kermani S, Senafi S. 2012. Characterization of Mononucleated Human Peripheral Blood Cells. The Scientific World Journal. 20121-8. https://doi.org/10.1100/2012/843843
11.
Raynaud CM, Maleki M, Lis R, Ahmed B, Al-Azwani I, Malek J, Safadi FF, Rafii A. 2012. Comprehensive Characterization of Mesenchymal Stem Cells from Human Placenta and Fetal Membrane and Their Response to Osteoactivin Stimulation. Stem Cells International. 20121-13. https://doi.org/10.1155/2012/658356
Wyłącznie do użytku badawczego. Nie do użytku w procedurach diagnostycznych.

O ile nie określono inaczej w specyfikacjach produktu(ów), każdy produkt przeciwciała jest sprzedawany wyłącznie do wewnętrznego użytku badawczego i nie może być używany do żadnych innych celów, w tym między innymi do celów komercyjnych, diagnostycznych lub terapeutycznych. Nasze procesy walidacji odnoszą się wyłącznie do zastosowań badawczych i nie potwierdzają ani nie zapewniają, że nasze przeciwciała mogą być wykorzystywane do jakichkolwiek nieautoryzowanych zastosowań określonych w niniejszym dokumencie.

Zaloguj się, aby kontynuować

Zaloguj się lub utwórz konto, aby kontynuować.

Nie masz konta użytkownika?