펩타이드 합성

펩타이드는 아미드 결합을 통해 연결된 두 개 이상의 아미노산으로 구성되며, 일반적으로 2~70개의 아미노산으로 이루어진 아미노산 사슬을 형성합니다. 펩타이드는 생물학적 활성을 나타내기 위한 접힘구조가 필요없어 단백질과 구별됩니다. 펩타이드는 내생적으로 angiotension, LHRH, 엔케팔린과 같은 펩타이드 호르몬으로 나타나며, 동물과 식물에서 독소가 펩타이드 형태로 발견됩니다. 펩타이드는 약물 개발을 위한 선도물질 화합물로서 또한 그 자체로 약물로서 큰 관심을 끌고 있습니다. 또한 백신, 생체 재료, 조직학적 프로브에 응용되며, 항체를 생성하기 위한 항원으로서 많은 수의 펩타이드가 사용됩니다. 

펩타이드는 용액 또는 고체 상태에서 화학적으로 합성됩니다. 이 과정은 N-보호된 아미노산과 유리 아미노기와 보호된 카복실산을 가진 아미노산 사이의 직접적/선택적 아미드 결합에 의해 형성됩니다. 고체상 합성에서, 카복실 보호기는 폴리머 지지체에 연결됩니다. 결합 형성 후, 다이펩타이드의 아미노 보호기가 제거되고, 다음 N 보호 아미노산이 결합됩니다.

고체상 펩타이드 합성(SSPS)은 효율성, 단순성, 속도, 병렬화 용이성 때문에 가장 자주 사용되는 펩타이드 합성 방법입니다. SSPS는 불용성 중합체 지지체에 부착된 아미노산 또는 펩타이드에 아미노산 및 측면 보호 아미노산 잔기를 순차적으로 추가합니다(그림 1).

N-α 보호에 산성 라벨 Boc 잔기(Boc SPPS) 또는 염기 라벨 Fmoc 잔기(Fmoc SPPS)가 사용됩니다. 이 보호기를 제거한 후, 결합 시약 또는 사전 활성화된 보호된 아미노산 유도체를 사용하여 그 다음 보호된 아미노산을 추가합니다. C 말단 아미노산은 링커를 통해 레진에 고정되며, 링커의 특성은 사슬 확장 후 펩타이드를 지지체로부터 방출하는 데 필요한 조건을 결정합니다. 측면 사슬 보호기는 종종 레진으로부터 펩타이드를 분리하여 동시에 절단되도록 선택됩니다(그림 2와 3).

대부분의 펩타이드는 Fmoc 방법을 사용하여 준비되며, 마지막 단계의 절단 및 보호제거는 특수 장비에서 고도로 독성이며 부식성인 무수 HF 액체를 사용해야 하는 Boc 방법과 대조됩니다.

100 아미노산 이상의 단백질 합성이 일반적으로  보고되지만, 50개의 아미노산으로 이루어진 펩타이드는 루틴하게 제조될 수 있습니다. 더 긴 단백질은 용액에서 완전히 탈보호된 펩타이드의 화학적 결찰로 만들어질 수 있습니다. 이 기법을 사용하면 박테리아에서 발현하기 어려운 천연 펩타이드를 합성하고, 비천연 또는 D-아미노산을 통합하며, 고리형, 분지형, 표지형 및 번역 후 변형 펩타이드를 생성할 수 있습니다.

액체 상태 펩타이드 합성은 보통 Boc 또는 Z-아미노 보호를 활용하며, 산업적 목적을 위한 대규모 펩타이드 합성 과정을 제외하고는 고체 상태 펩타이드 합성에 의해 대체되었습니다.