Przejdź do zawartości
Merck

CRISPR30

Sigma-Aldrich

Plazmid kontroli pozytywnej CRISPR LacZ dla bakterii

Zaloguj sięWyświetlanie cen organizacyjnych i kontraktowych


About This Item

Kod UNSPSC:
41106617
NACRES:
NA.51

Formularz

liquid

opakowanie

vial of 50 μL

stężenie

20 ng/μL in TE buffer; DNA (1μg of purified plasmid DNA)

metody

microbiological culture: suitable

Zastosowanie

CRISPR
genome editing

Promotor


Promoter activity: constitutive

Warunki transportu

dry ice

temp. przechowywania

−20°C

Opis ogólny

Ostatnie publikacje wykorzystujące rekombinację za pośrednictwem CRISPR/Cas9 w E. coli wskazują na skuteczność edycji bliską 100%, co czyni rekombinację za pośrednictwem CRISPR/Cas9 najpotężniejszą jak dotąd metodą inżynierii genomu bakteryjnego. Ponadto, rekombinacja za pośrednictwem Cas9 przezwycięża zależność od drugiego etapu rekombinacji, unika tworzenia destabilizujących miejsc bliznowatych, może być stosowana w multipleksowaniu i jest mniej czasochłonna niż poprzednie protokoły.

Tutaj przedstawiamy nowatorski system λ-Red z podwójnym wektorem CRISPR/Cas dla ulepszonej rekombinacji w E. coli. Wykazano, że nasz system ułatwia ukierunkowaną homologicznie naprawę DSB utworzonych przez endonukleazę Cas9, umożliwiając zmiany genetyczne poprzez integrację chromosomalną DNA dawcy.

Plazmid ten należy stosować w połączeniu z plazmidem rekombinacji homologicznej Cas9 Lambda Red dla E. coli (CAS9BAC1P) jako kontrolę pozytywną dla niestandardowego eksperymentu edycji genów. Niestandardowe gRNA (CRISPRBACD) można zaprojektować i zamówić za pośrednictwem strony https://www.sigmaaldrich.com/pc/ui/genomics-home/customcrispr

Plazmid CRISPR LacZ Positive Control Plasmid for Bacteria (CRISPR30) zawiera odstęp gRNA ukierunkowany na gen lacZ w dzikim typie E. coli wyrażany konstytutywnie z promotora J23119, marker oporności na ampicylinę, źródło replikacji pBR322 i gen sacB z Bacillus subtilis do utwardzania opartego na kontr-selekcji.

Zastosowanie

Edycja genomu bakterii
  • Rekombinacja za pomocą HR do analizy mutacji lub SNP
  • Tworzenie linii komórkowych knock-in z promotorami, znacznikami fuzyjnymi lub reporterami zintegrowanymi z endogennymi genami.
  • Tworzenie nokautów genów w liniach komórkowych E. coli
Inżynieria metaboliczna
Optymalizacja szczepu

Cechy i korzyści

Wydajność: zwiększona wydajność integracji za pośrednictwem HR
Bez markerów: nie wymaga wstawiania markerów oporności na antybiotyki
Bez blizn: brak sekwencji blizn po wycięciu markera, które często powodują rekombinację poza celem
Multipleksowanie: jednocześnie można używać wielu niestandardowych sekwencji gRNA

Zasada

Systemy CRISPR/Cas są wykorzystywane przez bakterie i archeony do obrony przed inwazją wirusów i plazmidów. Niedawno system CRISPR/Cas typu II z bakterii Streptococcus pyogenes został zaprojektowany tak, aby działał przy użyciu dwóch składników molekularnych: pojedynczego białka Cas9 i niekodującego RNA prowadzącego (gRNA). Endonukleazę Cas9 można zaprogramować za pomocą pojedynczego lub podwójnego gRNA, kierując dwuniciowe pęknięcie DNA (DSB) w pożądane miejsce genomu. Metody oparte na nukleazie są w dużej mierze toksyczne, gdy są stosowane jako narzędzia do edycji genów drobnoustrojów, ponieważ wiele bakterii nie posiada niezbędnych mechanizmów naprawy DNA występujących w systemach eukariotycznych. Jednakże, gdy CRISPR/Cas9 jest używany do pośredniczenia w rekombinacji, ta cytotoksyczna jakość oferuje przewagę, ponieważ indukowane przez Cas9 dwuniciowe pęknięcia zabijają komórki, które nie rekombinują z DNA dawcy. Zapewnia to nieodłączną metodę selekcji do edycji genów bez markerów i blizn, która jest znacznie wydajniejsza i bardziej podatna na multipleksowanie niż tradycyjne metody. Plazmid E. coli HR Positive Control (numer katalogowy CRISPR30) zawiera sekwencję gRNA ukierunkowaną na gen lacZ w dzikim typie bakterii E. coli i jest przeznaczony do stosowania w połączeniu z plazmidem E. coli HR Cas9 (numer katalogowy CAS9BAC1P) i szablonem dawcy ssDNA.
Ta strona może zawierać tekst przetłumaczony maszynowo.

Kod klasy składowania

12 - Non Combustible Liquids

Klasa zagrożenia wodnego (WGK)

WGK 2

Temperatura zapłonu (°F)

Not applicable

Temperatura zapłonu (°C)

Not applicable


Wybierz jedną z najnowszych wersji:

Certyfikaty analizy (CoA)

Lot/Batch Number

Nie widzisz odpowiedniej wersji?

Jeśli potrzebujesz konkretnej wersji, możesz wyszukać konkretny certyfikat według numeru partii lub serii.

Masz już ten produkt?

Dokumenty związane z niedawno zakupionymi produktami zostały zamieszczone w Bibliotece dokumentów.

Odwiedź Bibliotekę dokumentów

Yifan Li et al.
Metabolic engineering, 31, 13-21 (2015-07-05)
Engineering cellular metabolism for improved production of valuable chemicals requires extensive modulation of bacterial genome to explore complex genetic spaces. Here, we report the development of a CRISPR-Cas9 based method for iterative genome editing and metabolic engineering of Escherichia coli.
Michael E Pyne et al.
Applied and environmental microbiology, 81(15), 5103-5114 (2015-05-24)
To date, most genetic engineering approaches coupling the type II Streptococcus pyogenes clustered regularly interspaced short palindromic repeat (CRISPR)/Cas9 system to lambda Red recombineering have involved minor single nucleotide mutations. Here we show that procedures for carrying out more complex

Produkty

In this article, we present an application of our novel E. coli CRISPR/Cas-mediated Lambda-Red (λ-Red) homologous recombination (HR) vector system, which facilitates gene editing through the homology-directed repair (HDR) of double-stranded DNA breaks (DSBs) created by Cas9 endonuclease, using either ssDNA or dsDNA as an editing template.

Global Trade Item Number

SKUGTIN
CRISPR30-1EA4061841332459

Nasz zespół naukowców ma doświadczenie we wszystkich obszarach badań, w tym w naukach przyrodniczych, materiałoznawstwie, syntezie chemicznej, chromatografii, analityce i wielu innych dziedzinach.

Skontaktuj się z zespołem ds. pomocy technicznej