S7110
ApopTag Fluoreszein-In-situ-Apoptosenachweis-Kit
The ApopTag Fluorescein In Situ Apoptosis Detection Kit detects apoptotic cells in situ by the indirect TUNEL method, utilizing an anti-digoxigenin antibody that is conjugated to a Fluorescein reporter molecule.
Synonym(e):
Apoptosis detection kit
Anmeldenzur Ansicht organisationsspezifischer und vertraglich vereinbarter Preise
Alle Fotos(1)
About This Item
UNSPSC-Code:
12161503
eCl@ss:
32161000
NACRES:
NA.84
Empfohlene Produkte
Qualitätsniveau
Hersteller/Markenname
ApopTag
Chemicon®
Methode(n)
flow cytometry: suitable
immunocytochemistry: suitable
immunohistochemistry (formalin-fixed, paraffin-embedded sections): suitable
Nachweisverfahren
fluorometric
Versandbedingung
dry ice
Allgemeine Beschreibung
Das ApopTag-Fluorescein-In-situ-Apoptose-Detektions-Kit weist apoptotische Zellen mit der indirekten TUNEL-Methode in situ nach, wozu ein Anti-Digoxigenin-Antikörper, der an ein Fluorescein-Reportermolekül konjugiert ist, verwendet wird. Es bietet indirekte Immunfluoreszenzfärbung für 40 Proben. Die Ergebnisse werden entweder mithilfe der Durchflusszytometrie oder der Fluoreszenzmikroskopie analysiert.
Das ApopTag-Fluorescein-In-situ-Apoptose-Detektions-Kit wurde in den folgenden Modellsystemen auf spezifische Färbung getestet: (a) mit Dexamethason induzierte normale periphere Blutlymphozyten vom Menschen, wie sie in Zytospinen angefärbt werden, (b) sich zurückentwickelnde Brustdrüse der Ratte, wie sie in formalinfixierten, paraffineingebetteten Abschnitten angefärbt wird und (c) mit Camptothecin induzierte leukämische periphere Blutlymphozyten vom Menschen, wie sie in Zellsuspensionen angefärbt und für die quantitative Durchflusszytometrie verwendet werden.
Das ApopTag-Fluorescein-In-situ-Apoptose-Detektions-Kit wurde in den folgenden Modellsystemen auf spezifische Färbung getestet: (a) mit Dexamethason induzierte normale periphere Blutlymphozyten vom Menschen, wie sie in Zytospinen angefärbt werden, (b) sich zurückentwickelnde Brustdrüse der Ratte, wie sie in formalinfixierten, paraffineingebetteten Abschnitten angefärbt wird und (c) mit Camptothecin induzierte leukämische periphere Blutlymphozyten vom Menschen, wie sie in Zellsuspensionen angefärbt und für die quantitative Durchflusszytometrie verwendet werden.
Anwendung
Das ApopTag-Fluorescein-In-situ-Apoptose-Detektions-Kit weist apoptotische Zellen mit der indirekten TUNEL-Methode in situ nach, wozu ein Anti-Digoxigenin-Antikörper, der an ein Fluorescein-Reportermolekül konjugiert ist, verwendet wird.
EINLEITUNG
ApopTag In-situ-Apoptose-Detektions-Kits markieren apoptotische Zellen in Forschungsproben durch Modifizierung genomischer DNA unter Verwendung der terminalen Desoxynukleotidyltransferase (TdT) zum Nachweis positiver Zellen durch spezifische Färbung. Diese Anleitung enthält Informationen und Protokolle für das ApopTag Fluorescein-In-situ-Apoptose-Detektions-Kit (Artikelnummer S7110).
Verfahrensgrundsätze
Die in allen ApopTag Kits bereitgestellten Reagenzien sind dazu bestimmt, die freien 3′OH-DNA-Enden in situ mit chemisch markierten und unmarkierten Nukleotiden zu markieren. Die im Reaktionspuffer enthaltenen Nukleotide werden der DNA durch terminale Desoxynukleotidyltransferase (TdT) (13, 31) enzymatisch hinzugefügt. TdT katalysiert eine template-unabhängige Hinzufügung von Nukleotidtriphosphaten an die 3′-OH-Enden von doppelsträngiger oder einzelsträngiger DNA. Die eingebauten Nukleotide bilden ein Oligomer aus Digoxigenin-Nukleotid und unmarkiertem Nukleotid in zufälliger Reihenfolge. Das Verhältnis von markiertem zu unmarkiertem Nukleotid in ApopTag Kits wird optimiert, um die Bindung von Anti-Digoxigenin-Antikörpern zu fördern oder die Fluorescein-Selbstlöschung zu minimieren. Die genaue Länge des zugesetzten Oligomers wurde nicht gemessen.
DNA-Fragmente, die mit dem Digoxigenin-Nukleotid markiert wurden, dürfen dann einen Anti-Digoxigenin-Antikörper binden, der an Fluorescein konjugiert ist (Abbildung 1A). Fluoreszente Antikörper bieten einen empfindlichen Nachweis in der Immunhistochemie oder Immunzytochemie (d. h. auf Gewebe oder Zellen) und unterliegen keinen durch das Substrat oder den Entwicklungsschritt bedingten experimentellen Schwankungen. Dieses gemischte molekularbiologisch-histochemische System ermöglicht eine empfindliche und spezifische Färbung von sehr hohen Konzentrationen von 3′-OH-Enden, die in apoptotischen Körpern lokalisiert sind. Das ApopTag System unterscheidet sich signifikant von den zuvor beschriebenen In-situ-Markierungstechniken für Apoptose (13, 16, 38, 46), bei denen die Avidin-Bindung an zelluläres Biotin zu Fehlern führen kann. Es wurde nachgewiesen, dass das Digoxigenin-/Anti-Digoxigenin-System auf Avidin-/Biotin-Systeme gleichermaßen empfindlich reagiert (22). Immunchemisch ähnliche Liganden für die Bindung des Anti-Digoxigenin-Antikörpers kommen in tierischen Geweben im Allgemeinen nur geringfügig vor und gewährleisten daher eine geringe Hintergrundfärbung. Das in den ApopTag Kits verwendete spezifische Anti-Digoxigenin-Reagens ist ein affinitätsgereinigter polyklonaler Schaf-Antikörper, der eine Kreuzreaktivität von < 1 % mit den wichtigsten Wirbeltiersteroiden aufweist. Zudem wurde der Fc-Abschnitt dieses Antikörpers durch proteolytischen Verdau entfernt, um jegliche unspezifische Adsorption an zelluläre Fc-Rezeptoren auszuschließen.
ApopTag In-situ-Apoptose-Detektions-Kits markieren apoptotische Zellen in Forschungsproben durch Modifizierung genomischer DNA unter Verwendung der terminalen Desoxynukleotidyltransferase (TdT) zum Nachweis positiver Zellen durch spezifische Färbung. Diese Anleitung enthält Informationen und Protokolle für das ApopTag Fluorescein-In-situ-Apoptose-Detektions-Kit (Artikelnummer S7110).
Verfahrensgrundsätze
Die in allen ApopTag Kits bereitgestellten Reagenzien sind dazu bestimmt, die freien 3′OH-DNA-Enden in situ mit chemisch markierten und unmarkierten Nukleotiden zu markieren. Die im Reaktionspuffer enthaltenen Nukleotide werden der DNA durch terminale Desoxynukleotidyltransferase (TdT) (13, 31) enzymatisch hinzugefügt. TdT katalysiert eine template-unabhängige Hinzufügung von Nukleotidtriphosphaten an die 3′-OH-Enden von doppelsträngiger oder einzelsträngiger DNA. Die eingebauten Nukleotide bilden ein Oligomer aus Digoxigenin-Nukleotid und unmarkiertem Nukleotid in zufälliger Reihenfolge. Das Verhältnis von markiertem zu unmarkiertem Nukleotid in ApopTag Kits wird optimiert, um die Bindung von Anti-Digoxigenin-Antikörpern zu fördern oder die Fluorescein-Selbstlöschung zu minimieren. Die genaue Länge des zugesetzten Oligomers wurde nicht gemessen.
DNA-Fragmente, die mit dem Digoxigenin-Nukleotid markiert wurden, dürfen dann einen Anti-Digoxigenin-Antikörper binden, der an Fluorescein konjugiert ist (Abbildung 1A). Fluoreszente Antikörper bieten einen empfindlichen Nachweis in der Immunhistochemie oder Immunzytochemie (d. h. auf Gewebe oder Zellen) und unterliegen keinen durch das Substrat oder den Entwicklungsschritt bedingten experimentellen Schwankungen. Dieses gemischte molekularbiologisch-histochemische System ermöglicht eine empfindliche und spezifische Färbung von sehr hohen Konzentrationen von 3′-OH-Enden, die in apoptotischen Körpern lokalisiert sind. Das ApopTag System unterscheidet sich signifikant von den zuvor beschriebenen In-situ-Markierungstechniken für Apoptose (13, 16, 38, 46), bei denen die Avidin-Bindung an zelluläres Biotin zu Fehlern führen kann. Es wurde nachgewiesen, dass das Digoxigenin-/Anti-Digoxigenin-System auf Avidin-/Biotin-Systeme gleichermaßen empfindlich reagiert (22). Immunchemisch ähnliche Liganden für die Bindung des Anti-Digoxigenin-Antikörpers kommen in tierischen Geweben im Allgemeinen nur geringfügig vor und gewährleisten daher eine geringe Hintergrundfärbung. Das in den ApopTag Kits verwendete spezifische Anti-Digoxigenin-Reagens ist ein affinitätsgereinigter polyklonaler Schaf-Antikörper, der eine Kreuzreaktivität von < 1 % mit den wichtigsten Wirbeltiersteroiden aufweist. Zudem wurde der Fc-Abschnitt dieses Antikörpers durch proteolytischen Verdau entfernt, um jegliche unspezifische Adsorption an zelluläre Fc-Rezeptoren auszuschließen.
Komponenten
Equilibrierungspuffer 90416 3,0 mL, -15 °C bis -25 °C
Reaktionspuffer 90417 2,0 mL, -15 °C bis -25 °C
TdT-Enzym 90418 0,64 mL, -15 °C bis -25 °C
Stopp-/Waschpuffer 90419 20 mL, -15 °C bis -25 °C
Blockierungslösung 90425 2,6 mL, -15 °C bis -25 °C
Anti-Digoxigenin-Fluorescein* 90426 2,1 mL, 2 °C bis 8 °C
Kunststoff-Deckgläschen 90421 je 100 St. Raumtemperatur
*affinitätsgereinigter polyklonaler Schaf-Antikörper
Reaktionspuffer 90417 2,0 mL, -15 °C bis -25 °C
TdT-Enzym 90418 0,64 mL, -15 °C bis -25 °C
Stopp-/Waschpuffer 90419 20 mL, -15 °C bis -25 °C
Blockierungslösung 90425 2,6 mL, -15 °C bis -25 °C
Anti-Digoxigenin-Fluorescein* 90426 2,1 mL, 2 °C bis 8 °C
Kunststoff-Deckgläschen 90421 je 100 St. Raumtemperatur
*affinitätsgereinigter polyklonaler Schaf-Antikörper
Lagerung und Haltbarkeit
1. Das Kit bis zum ersten Gebrauch bei -15 °C bis -25 °C lagern. Wenn das Kit nach dem ersten Gebrauch binnen drei Monaten verwendet wird, ist das TdT-Enzym (90418) bei -15 °C bis -25 °C zu lagern; die restlichen Komponenten sind bei 2 °C bis 8 °C zu lagern.
2. Den Anti-Digoxigenin-Fluorescein-Antikörper (90426) vor unnötiger Lichtexposition schützen.
Vorsichtshinweise
1. Die folgenden Komponenten des Kits enthalten Kaliumcacodylat (Dimethylarsinsäure) als Puffer: Equilibrierungspuffer (90416), Reaktionspuffer (90417) und TdT-Enzym (90418). Diese Komponenten sind bei Verschlucken gesundheitsschädlich; Kontakt mit Haut und Augen vermeiden (Handschuhe, Schutzbrille tragen) und Kontaktbereiche sofort abwaschen.
2. Antikörperkonjugate (90426) und Blockierungslösungen (90425) enthalten 0,08 % Natriumazid als Konservierungsmittel.
3. TdT-Enzym (90418) enthält Glycerin und gefriert bei -20 °C nicht. Für eine maximale Haltbarkeitsdauer dieses Reagenz vor der Entnahme nicht auf Raumtemperatur erwärmen.
2. Den Anti-Digoxigenin-Fluorescein-Antikörper (90426) vor unnötiger Lichtexposition schützen.
Vorsichtshinweise
1. Die folgenden Komponenten des Kits enthalten Kaliumcacodylat (Dimethylarsinsäure) als Puffer: Equilibrierungspuffer (90416), Reaktionspuffer (90417) und TdT-Enzym (90418). Diese Komponenten sind bei Verschlucken gesundheitsschädlich; Kontakt mit Haut und Augen vermeiden (Handschuhe, Schutzbrille tragen) und Kontaktbereiche sofort abwaschen.
2. Antikörperkonjugate (90426) und Blockierungslösungen (90425) enthalten 0,08 % Natriumazid als Konservierungsmittel.
3. TdT-Enzym (90418) enthält Glycerin und gefriert bei -20 °C nicht. Für eine maximale Haltbarkeitsdauer dieses Reagenz vor der Entnahme nicht auf Raumtemperatur erwärmen.
Rechtliche Hinweise
CHEMICON is a registered trademark of Merck KGaA, Darmstadt, Germany
Haftungsausschluss
Sofern in unserem Katalog oder anderen Begleitdokumenten unserer Produkte nicht anders angegeben, sind unsere Produkte nur für Forschungszwecke vorgesehen und nicht für andere Zwecke zu verwenden, einschließlich, jedoch nicht beschränkt auf unautorisierte kommerzielle Verwendung, zur In-vitro-Diagnostik, für Ex-vivo- oder In-vivo-Therapiezwecke oder jegliche Art der Einnahme oder Anwendung bei Menschen oder Tieren.
Signalwort
Danger
H-Sätze
Gefahreneinstufungen
Aquatic Chronic 2 - Carc. 1B - STOT RE 2 Inhalation
Zielorgane
Respiratory Tract
Lagerklassenschlüssel
6.1C - Combustible acute toxic Cat.3 / toxic compounds or compounds which causing chronic effects
Analysenzertifikate (COA)
Suchen Sie nach Analysenzertifikate (COA), indem Sie die Lot-/Chargennummer des Produkts eingeben. Lot- und Chargennummern sind auf dem Produktetikett hinter den Wörtern ‘Lot’ oder ‘Batch’ (Lot oder Charge) zu finden.
Besitzen Sie dieses Produkt bereits?
In der Dokumentenbibliothek finden Sie die Dokumentation zu den Produkten, die Sie kürzlich erworben haben.
Kunden haben sich ebenfalls angesehen
Toru Nakazawa et al.
Molecular vision, 12, 867-878 (2006-08-19)
Photoreceptor apoptosis is associated with retinal detachment (RD) induced photoreceptor degeneration. Previously, we demonstrated the importance of caspase activation for RD-induced photoreceptor death in a rat model of RD. However, extracellular signals that precede the activation of caspases and photoreceptor
Martin Zenker et al.
Nature genetics, 37(12), 1345-1350 (2005-11-29)
Johanson-Blizzard syndrome (OMIM 243800) is an autosomal recessive disorder that includes congenital exocrine pancreatic insufficiency, multiple malformations such as nasal wing aplasia, and frequent mental retardation. We mapped the disease-associated locus to chromosome 15q14-21.1 and identified mutations, mostly truncating ones
Sarah L Lebeis et al.
Journal of immunology (Baltimore, Md. : 1950), 179(1), 566-577 (2007-06-21)
Enteropathogenic Escherichia coli, enterohemorrhagic E. coli, and Citrobacter rodentium are classified as attaching and effacing pathogens based on their ability to adhere to intestinal epithelium via actin-filled membranous protrusions (pedestals). Infection of mice with C. rodentium causes breach of the
Junichiro En et al.
Infection and immunity, 76(5), 2002-2007 (2008-03-05)
Buruli ulcer is a chronic skin disease caused by Mycobacterium ulcerans, which produces a toxic lipid mycolactone. Despite the extensive necrosis and tissue damage, the lesions are painless. This absence of pain prevents patients from seeking early treatment and, as
Brian W Parks et al.
Journal of lipid research, 46(7), 1405-1415 (2005-04-19)
Lysophosphatidylcholine (LPC) is considered a major proatherogenic component of oxidized low density lipoprotein based on its proinflammatory actions in vitro. LPC stimulates macrophage and T-cell chemotaxis via the G protein-coupled receptor G2A and may thus promote inflammatory cell infiltration during
Artikel
Cellular apoptosis assays to detect programmed cell death using Annexin V, Caspase and TUNEL DNA fragmentation assays.
Unser Team von Wissenschaftlern verfügt über Erfahrung in allen Forschungsbereichen einschließlich Life Science, Materialwissenschaften, chemischer Synthese, Chromatographie, Analytik und vielen mehr..
Setzen Sie sich mit dem technischen Dienst in Verbindung.