硫酸アンモニウム懸濁液として提供される酵素の使用方法

－硫酸アンモニウムが反応に干渉するおそれがある場合：

1. 酵素を冷蔵庫から取り出します。注記：硫酸アンモニウム懸濁液は冷凍しないことを強くお勧めします。
2. キャップがしっかりと閉まっていることを確認してから、バイアル／ボトルを数回反転させて懸濁液を白濁させます。これには1分程度かかります。ボルテックスや超音波処理はしないでください。このような過酷な処理は、酵素の一部を変性させるおそれがあります。
3. ピペットと滅菌の広口径ピペットチップを使用して、懸濁液の一部を取り出します。
4. 清潔な微小遠心管（使用する容量が多い場合は遠心管）へ移します。
5. 約10,000～15,000 x gで10分間遠心分離して、酵素をペレット状にします。できれば、2℃～8℃で冷蔵保存した微小遠心セットを使用してください。
6. できるだけ透明な上清を慎重に取り出して、保持します。硫酸アンモニウム溶液をすべて取り出す必要はありません。
7. 適量の反応バッファーを添加してペレットを溶解します。
8. 上清とペレットから得られた溶液を分析し、タンパク質含有量および／または酵素活性を調べます。

－硫酸アンモニウムが反応に干渉しない場合：

1. 上記のステップ1～3に従います。
2. この一部を反応バッファーに直接添加します。

硫酸アンモニウム懸濁液に対しては、ほとんどの酵素は固形になることに留意してください。硫酸アンモニウム溶液中には、ごくわずかな量の酵素しか存在しないと考えられます。