AB5509
Anticorps µ anti-récepteur opiacé µ
Chemicon®, from guinea pig
Synonyme(s) :
MOR-1
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About This Item
Code UNSPSC :
12352203
eCl@ss :
32160702
Nomenclature NACRES :
NA.41
Produits recommandés
Source biologique
guinea pig
Niveau de qualité
Forme d'anticorps
affinity isolated antibody
Type de produit anticorps
primary antibodies
Clone
polyclonal
Produit purifié par
affinity chromatography
Espèces réactives
primate, rat, mouse
Fabricant/nom de marque
Chemicon®
Technique(s)
immunocytochemistry: suitable
immunohistochemistry: suitable
Numéro d'accès NCBI
Numéro d'accès UniProt
Conditions d'expédition
dry ice
Modification post-traductionnelle de la cible
unmodified
Informations sur le gène
human ... OPRM1(4988)
Spécificité
Récepteur opiacé mu.
Immunogène
Peptide synthétique (référence AG375) de l'extrémité C-terminale du récepteur opiacé mu de rat correspondant aux résidus 384 à 398 du récepteur opiacé mu de rat.
Application
Domaine de recherche
Neurosciences
Neurosciences
Immunohistochimie : dilution du 1/50e au 1/500e Voir protocole.
Immunocytochimie : dilution du 1/50e au 1/500e Voir protocole.
Il revient à l'utilisateur final de déterminer les dilutions de travail optimales.
Protocole d'immunohistochimie : Des rats Sprague-Dawley mâles (d'un poids corporel de 100 à 150 g) ont été anesthésiés avec du pentobarbital sodique et perfusés via l'aorte ascendante avec : 1) 50 ml de solution de Tyrode sans Ca2+, puis 2) un fixateur composé de paraformaldéhyde et d'acide picrique et 3) 10 % de saccharose dans du PBS comme cryoprotecteur. Les tissus ont rapidement été disséqués et stockés toute une nuit dans un tampon phosphate 0,1 M (pH 7,4) contenant 10 % de saccharose. Les coupes de tissus montées sur lames ont été incubées avec un tampon de blocage pendant 1 heure à température ambiante. L'anticorps principal a été dilué dans le tampon de blocage à une dilution de travail adaptée. Le tampon de blocage a été retiré et les lames ont ensuite été incubées à une température comprise entre 2 et 8 °C pendant 18 à 24 heures avec AB5509. Après 3 rinçages dans du PBS, les coupes ont été incubées pendant 60 minutes à température ambiante avec des anticorps secondaires conjugués au Cy3. Après montage dans un mélange de PBS et de glycérol (1:3) contenant 0,1 % de p-phénylènediamine, les coupes ont été examinées avec un microscope en épifluorescence Microphot-SA de Nikon.
Protocole d'immunocytochimie : Les cellules transfectées du récepteur d'opiacé Mu ont été traitées pour l'immunofluorescence indirecte. Le milieu a été retiré et les cellules ont été lavées avec précaution 3 fois dans un milieu sans sérum. Le milieu a été retiré et les cellules ont été lavées avec précaution 3 fois dans un milieu sans sérum. Après la fixation, les cellules ont été traitées pour l'immunofluorescence indirecte tel que décrit ci-dessus.
Immunocytochimie : dilution du 1/50e au 1/500e Voir protocole.
Il revient à l'utilisateur final de déterminer les dilutions de travail optimales.
Protocole d'immunohistochimie : Des rats Sprague-Dawley mâles (d'un poids corporel de 100 à 150 g) ont été anesthésiés avec du pentobarbital sodique et perfusés via l'aorte ascendante avec : 1) 50 ml de solution de Tyrode sans Ca2+, puis 2) un fixateur composé de paraformaldéhyde et d'acide picrique et 3) 10 % de saccharose dans du PBS comme cryoprotecteur. Les tissus ont rapidement été disséqués et stockés toute une nuit dans un tampon phosphate 0,1 M (pH 7,4) contenant 10 % de saccharose. Les coupes de tissus montées sur lames ont été incubées avec un tampon de blocage pendant 1 heure à température ambiante. L'anticorps principal a été dilué dans le tampon de blocage à une dilution de travail adaptée. Le tampon de blocage a été retiré et les lames ont ensuite été incubées à une température comprise entre 2 et 8 °C pendant 18 à 24 heures avec AB5509. Après 3 rinçages dans du PBS, les coupes ont été incubées pendant 60 minutes à température ambiante avec des anticorps secondaires conjugués au Cy3. Après montage dans un mélange de PBS et de glycérol (1:3) contenant 0,1 % de p-phénylènediamine, les coupes ont été examinées avec un microscope en épifluorescence Microphot-SA de Nikon.
Protocole d'immunocytochimie : Les cellules transfectées du récepteur d'opiacé Mu ont été traitées pour l'immunofluorescence indirecte. Le milieu a été retiré et les cellules ont été lavées avec précaution 3 fois dans un milieu sans sérum. Le milieu a été retiré et les cellules ont été lavées avec précaution 3 fois dans un milieu sans sérum. Après la fixation, les cellules ont été traitées pour l'immunofluorescence indirecte tel que décrit ci-dessus.
L'anticorps anti-récepteur opiacé µ-AB5509 est un anticorps dirigé contre les récepteurs opiacés pour une utilisation en IC et en IH.
Sous-domaine de recherche
Neuro-inflammation et douleurs
Neuro-inflammation et douleurs
Liaison
Remplace le(s) produit(s) suivant(s) : AB1774
Forme physique
PBS contenant 50 % de glycérol ; concentration de 1,0 mg/ml
Stockage et stabilité
Conserver à -20 °C sous forme non diluée pendant 6 mois maximum à partir de la date de réception. Éviter les congélation/décongélation répétées.
Informations légales
CHEMICON is a registered trademark of Merck KGaA, Darmstadt, Germany
Clause de non-responsabilité
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Code de la classe de stockage
12 - Non Combustible Liquids
Classe de danger pour l'eau (WGK)
WGK 2
Point d'éclair (°F)
Not applicable
Point d'éclair (°C)
Not applicable
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Dae-Hyun Roh,Hyoung-Sig Seo,Seo-Yeon Yoon,Sunok Song,Ho-Jae Han,Alvin J Beitz,Jang-Hern Lee
Anesthesia and Analgesia null
The kappa-opioid receptor is primarily postsynaptic: combined immunohistochemical localization of the receptor and endogenous opioids.
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Zou, S; Fitting, S; Hahn, YK; Welch, SP; El-Hage, N; Hauser, KF; Knapp, PE
Brain null
Yong-Hui Liao et al.
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Chronic pain occurs in ~85-90% of chronic pancreatitis (CP) patients. However, as the pathogenesis of CP pain remains to be fully understood, the current therapies for CP pain remain inadequate. Emerging evidence has suggested that the epigenetic modulations of genes
D Gagnon et al.
Scientific reports, 7, 41432-41432 (2017-01-28)
The loss of nigrostriatal dopamine neurons in Parkinson's disease induces a reduction in the number of dendritic spines on medium spiny neurons (MSNs) of the striatum expressing D1 or D2 dopamine receptor. Consequences on MSNs expressing both receptors (D1/D2 MSNs)
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