AB5896
Anti-P2X3-Rezeptor-Antikörper, Schmerz
serum, Chemicon®
Synonym(e):
P2X3 Antibody
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About This Item
UNSPSC-Code:
12352203
eCl@ss:
32160702
NACRES:
NA.41
Empfohlene Produkte
Biologische Quelle
guinea pig
Qualitätsniveau
Antikörperform
serum
Antikörper-Produkttyp
primary antibodies
Klon
polyclonal
Speziesreaktivität
human, rat, mouse
Hersteller/Markenname
Chemicon®
Methode(n)
immunocytochemistry: suitable
immunohistochemistry: suitable
NCBI-Hinterlegungsnummer
UniProt-Hinterlegungsnummer
Versandbedingung
dry ice
Posttranslationale Modifikation Target
unmodified
Angaben zum Gen
human ... P2RX3(5024)
Spezifität
P2X3-Rezeptor.
Immunogen
Ein Peptid mit 15 Aminosäuren, das den Aminosäuren 383–397 des Carboxy-Terminus des P2X3-Rezeptorproteins der Ratte entspricht.
Kontrollpeptid: Best.-Nr. AG356
Kontrollpeptid: Best.-Nr. AG356
Anwendung
Dieser Anti-P2X3-Rezeptor-Antikörper, Schmerz, ist zur Verwendung in IC und IH für den Nachweis des P2X3-Rezeptors validiert.
Forschungskategorie
Neurowissenschaft
Neurowissenschaft
Forschungsunterkategorie
Neurotransmitter & Rezeptoren
Neuroinflammation & Schmerz
Neurotransmitter & Rezeptoren
Neuroinflammation & Schmerz
Immunhistochemie: 1:1.000.
Immunzytochemie: 1:1.000.
Optimale Arbeitsverdünnungen müssen vom Endanwender bestimmt werden.
ANWENDUNGSHINWEISE FÜR AB5896
IMMUNHISTOCHEMIE
Männliche Sprague-Dawley-Ratten (Körpergewicht 100–150 g) wurden mit Natrium-Pentobarbital betäubt und über die aufsteigende Aorta mit Folgendem perfundiert: 1) 50 ml Ca2+-freie Tyrode-Lösung, gefolgt von 2) einem Formalin-Pikrinsäure-Fixativ (4 % Paraformaldehyd mit 0,4 % Pikrinsäure in 0,16 M Phosphatpuffer, pH 6,9) und 3) 10 % Sucrose in PBS als Frostschutzmittel. Die Gewebe wurden rasch präpariert und über Nacht in 0,1 M Phosphatpuffer (pH 7,4) mit 10 % Sucrose aufbewahrt. Die auf Objektträger aufgebrachten Gewebeschnitte wurden mit Blockierungspuffer 1 Stunde bei Raumtemperatur inkubiert. Der Primärantikörper wurde in Blockierungspuffer auf eine geeignete Arbeitsverdünnung verdünnt. Der Blockierungspuffer wurde entfernt, anschließend wurden die Objektträger bei 2–8 °C für eine Dauer von 18–24 Stunden mit AB5896 (1:1.000) inkubiert. Nach 3-maligem Spülen in PBS wurden die Schnitte bei Raumtemperatur mit Cy3-konjugierten Sekundärantikörpern 60 Minuten lang inkubiert. Nach dem Fixieren in einem Gemisch aus PBS und Glycerin (1:3), das 0,1 % p-Phenylendiamin enthielt, wurden die Schnitte mit einem Nikon-Microphot-SA-Epifluoreszenzmikroskop untersucht.
IMMUNZYTOCHEMIE
P2X3-transfizierte Zellen wurden für die indirekte Immunfluoreszenz verarbeitet. Das Medium wurde entfernt und die Zellen wurden vorsichtig 3 Mal mit serumfreiem Medium gewaschen. Nach dem Fixierungsverfahren wurden die Zellen wie oben beschrieben für die indirekte Immunfluoreszenz verarbeitet.
Immunzytochemie: 1:1.000.
Optimale Arbeitsverdünnungen müssen vom Endanwender bestimmt werden.
ANWENDUNGSHINWEISE FÜR AB5896
IMMUNHISTOCHEMIE
Männliche Sprague-Dawley-Ratten (Körpergewicht 100–150 g) wurden mit Natrium-Pentobarbital betäubt und über die aufsteigende Aorta mit Folgendem perfundiert: 1) 50 ml Ca2+-freie Tyrode-Lösung, gefolgt von 2) einem Formalin-Pikrinsäure-Fixativ (4 % Paraformaldehyd mit 0,4 % Pikrinsäure in 0,16 M Phosphatpuffer, pH 6,9) und 3) 10 % Sucrose in PBS als Frostschutzmittel. Die Gewebe wurden rasch präpariert und über Nacht in 0,1 M Phosphatpuffer (pH 7,4) mit 10 % Sucrose aufbewahrt. Die auf Objektträger aufgebrachten Gewebeschnitte wurden mit Blockierungspuffer 1 Stunde bei Raumtemperatur inkubiert. Der Primärantikörper wurde in Blockierungspuffer auf eine geeignete Arbeitsverdünnung verdünnt. Der Blockierungspuffer wurde entfernt, anschließend wurden die Objektträger bei 2–8 °C für eine Dauer von 18–24 Stunden mit AB5896 (1:1.000) inkubiert. Nach 3-maligem Spülen in PBS wurden die Schnitte bei Raumtemperatur mit Cy3-konjugierten Sekundärantikörpern 60 Minuten lang inkubiert. Nach dem Fixieren in einem Gemisch aus PBS und Glycerin (1:3), das 0,1 % p-Phenylendiamin enthielt, wurden die Schnitte mit einem Nikon-Microphot-SA-Epifluoreszenzmikroskop untersucht.
IMMUNZYTOCHEMIE
P2X3-transfizierte Zellen wurden für die indirekte Immunfluoreszenz verarbeitet. Das Medium wurde entfernt und die Zellen wurden vorsichtig 3 Mal mit serumfreiem Medium gewaschen. Nach dem Fixierungsverfahren wurden die Zellen wie oben beschrieben für die indirekte Immunfluoreszenz verarbeitet.
Physikalische Form
Serum. Flüssig. Enthält 0,05 % Natriumazid.
Lagerung und Haltbarkeit
Kann bei -20 °C in unverdünnten Aliquoten bis zu 6 Monate aufbewahrt werden. Wiederholte Einfrier-/Auftauzyklen vermeiden.
Rechtliche Hinweise
CHEMICON is a registered trademark of Merck KGaA, Darmstadt, Germany
Haftungsausschluss
Sofern in unserem Katalog oder anderen Begleitdokumenten unserer Produkte nicht anders angegeben, sind unsere Produkte nur für Forschungszwecke vorgesehen und nicht für andere Zwecke zu verwenden, einschließlich, jedoch nicht beschränkt auf unautorisierte kommerzielle Verwendung, zur In-vitro-Diagnostik, für Ex-vivo- oder In-vivo-Therapiezwecke oder jegliche Art der Einnahme oder Anwendung bei Menschen oder Tieren.
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Lagerklassenschlüssel
10 - Combustible liquids
WGK
WGK 1
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Juliana Maia Teixeira et al.
Molecular neurobiology, 54(8), 6174-6186 (2016-10-07)
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Localization of P2X2 and P2X3 receptors in rat trigeminal ganglion neurons.
Staikopoulos, V; Sessle, BJ; Furness, JB; Jennings, EA
Neuroscience null
Central connectivity of transient receptor potential melastatin 8-expressing axons in the brain stem and spinal dorsal horn.
Kim, YS; Park, JH; Choi, SJ; Bae, JY; Ahn, DK; McKemy, DD; Bae, YC
Testing null
P2X(2)- and P2X(3)-positive fibers in fungiform papillae originate from the chorda tympani but not the trigeminal nerve in rats and mice.
Yusuke Ishida,Shinya Ugawa,Takashi Ueda,Takahiro Yamada,Yasuhiro Shibata,Aki Hondoh et al.
The Journal of Comparative Neurology null
Z-J Wang et al.
Anatomy and embryology, 207(4-5), 363-371 (2003-11-19)
Intraganglionic laminar endings (IGLEs) represent the most prominent vagal afferent terminal structures throughout the gastrointestinal tract. They are most prominent in the esophagus and stomach, but can be found down to the distal colon. Their role as mechanosensors as proposed
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