AB5894
Anti-P2X2-Rezeptor-Antikörper
serum, Chemicon®
Anmeldenzur Ansicht organisationsspezifischer und vertraglich vereinbarter Preise
Alle Fotos(1)
About This Item
UNSPSC-Code:
12352203
eCl@ss:
32160702
NACRES:
NA.41
Biologische Quelle
guinea pig
Qualitätsniveau
Antikörperform
serum
Antikörper-Produkttyp
primary antibodies
Klon
polyclonal
Speziesreaktivität
rat, human
Hersteller/Markenname
Chemicon®
Methode(n)
immunocytochemistry: suitable
immunohistochemistry: suitable
western blot: suitable
NCBI-Hinterlegungsnummer
UniProt-Hinterlegungsnummer
Versandbedingung
dry ice
Posttranslationale Modifikation Target
unmodified
Angaben zum Gen
human ... P2RX2(22953)
Spezifität
P2X2-Rezeptor.
Immunogen
Ein Peptid mit 13 Aminosäuren, das den Aminosäuren 460–472 des Carboxy-Terminus des P2X2-Rezeptorproteins der Ratte entspricht.
Kontrollpeptid: Best.-Nr. AG354
Kontrollpeptid: Best.-Nr. AG354
Anwendung
Der Anti-P2X2-Antikörper ist ein Antikörper gegen P2X2 zur Verwendung in IC, IH und WB.
Forschungskategorie
Neurowissenschaft
Neurowissenschaft
Forschungsunterkategorie
Neurotransmitter & Rezeptoren
Neurotransmitter & Rezeptoren
Immunblotting: 1:500
Immunhistochemie: 1:500.
Immunzytochemie: 1:500.
Optimale Arbeitsverdünnungen müssen vom Endanwender bestimmt werden.
ANWENDUNGSHINWEISE FÜR AB5894
IMMUNHISTOCHEMIE
Männliche Sprague-Dawley-Ratten (Körpergewicht 100–150 g) wurden mit Natrium-Pentobarbital betäubt und über die aufsteigende Aorta mit Folgendem perfundiert: 1) 50 ml Ca2+-freie Tyrode-Lösung, gefolgt von 2) einem Formalin-Pikrinsäure-Fixativ (4 % Paraformaldehyd mit 0,4 % Pikrinsäure in 0,16 M Phosphatpuffer, pH 6,9) und 3) 10 % Sucrose in PBS als Frostschutzmittel. Die Gewebe wurden rasch präpariert und über Nacht in 0,1 M Phosphatpuffer (pH 7,4) mit 10 % Sucrose aufbewahrt. Die auf Objektträger aufgebrachten Gewebeschnitte wurden mit Blockierungspuffer 1 Stunde bei Raumtemperatur inkubiert. Der Primärantikörper wurde in Blockierungspuffer auf eine geeignete Arbeitsverdünnung verdünnt. Der Blockierungspuffer wurde entfernt, anschließend wurden die Objektträger bei 2–8 °C für eine Dauer von 18–24 Stunden mit AB5894 (1:500) inkubiert. Nach 3-maligem Spülen in PBS wurden die Schnitte 60 Minuten bei Raumtemperatur mit Cy3-konjugierten Sekundärantikörpern inkubiert. Nach dem Fixieren in einem Gemisch aus PBS und Glycerin (1:3), das 0,1 % p-Phenylendiamin enthielt, wurden die Schnitte mit einem Nikon-Microphot-SA-Epifluoreszenzmikroskop untersucht.
IMMUNZYTOCHEMIE
P2X2-transfizierte Zellen wurden für die indirekte Immunfluoreszenz verarbeitet. Das Medium wurde entfernt und die Zellen wurden vorsichtig 3 Mal mit serumfreiem Medium gewaschen. Nach dem Fixierungsverfahren wurden die Zellen für die indirekte Immunfluoreszenz wie oben beschrieben verarbeitet.
WESTERN BLOTTING
Die Zellmembranextrakte wurden mittels Elektrophorese (8 % Acrylamid) mit SDS unter reduzierenden Bedingungen untersucht und zu einer Nylonmembran übertragen. Die Membranen wurden 1 Stunde bei 2–8 °C mit 0,1 % Tween 20 und 2,5 % Milchpulver (w/v) in PBS blockiert. Die Membranen wurden mit AB5894, im Verhältnis von 1:500 mit demselben Puffer verdünnt, über Nacht bei 2–8 °C inkubiert. Die Membranen wurden gespült und mit HRP-konjugiertem sekundärem Antikörper 1 Stunde bei Raumtemperatur inkubiert. Nach dem Spülen wurden die Membranen mittels erweiterter Chemilumineszenz verarbeitet.
Immunhistochemie: 1:500.
Immunzytochemie: 1:500.
Optimale Arbeitsverdünnungen müssen vom Endanwender bestimmt werden.
ANWENDUNGSHINWEISE FÜR AB5894
IMMUNHISTOCHEMIE
Männliche Sprague-Dawley-Ratten (Körpergewicht 100–150 g) wurden mit Natrium-Pentobarbital betäubt und über die aufsteigende Aorta mit Folgendem perfundiert: 1) 50 ml Ca2+-freie Tyrode-Lösung, gefolgt von 2) einem Formalin-Pikrinsäure-Fixativ (4 % Paraformaldehyd mit 0,4 % Pikrinsäure in 0,16 M Phosphatpuffer, pH 6,9) und 3) 10 % Sucrose in PBS als Frostschutzmittel. Die Gewebe wurden rasch präpariert und über Nacht in 0,1 M Phosphatpuffer (pH 7,4) mit 10 % Sucrose aufbewahrt. Die auf Objektträger aufgebrachten Gewebeschnitte wurden mit Blockierungspuffer 1 Stunde bei Raumtemperatur inkubiert. Der Primärantikörper wurde in Blockierungspuffer auf eine geeignete Arbeitsverdünnung verdünnt. Der Blockierungspuffer wurde entfernt, anschließend wurden die Objektträger bei 2–8 °C für eine Dauer von 18–24 Stunden mit AB5894 (1:500) inkubiert. Nach 3-maligem Spülen in PBS wurden die Schnitte 60 Minuten bei Raumtemperatur mit Cy3-konjugierten Sekundärantikörpern inkubiert. Nach dem Fixieren in einem Gemisch aus PBS und Glycerin (1:3), das 0,1 % p-Phenylendiamin enthielt, wurden die Schnitte mit einem Nikon-Microphot-SA-Epifluoreszenzmikroskop untersucht.
IMMUNZYTOCHEMIE
P2X2-transfizierte Zellen wurden für die indirekte Immunfluoreszenz verarbeitet. Das Medium wurde entfernt und die Zellen wurden vorsichtig 3 Mal mit serumfreiem Medium gewaschen. Nach dem Fixierungsverfahren wurden die Zellen für die indirekte Immunfluoreszenz wie oben beschrieben verarbeitet.
WESTERN BLOTTING
Die Zellmembranextrakte wurden mittels Elektrophorese (8 % Acrylamid) mit SDS unter reduzierenden Bedingungen untersucht und zu einer Nylonmembran übertragen. Die Membranen wurden 1 Stunde bei 2–8 °C mit 0,1 % Tween 20 und 2,5 % Milchpulver (w/v) in PBS blockiert. Die Membranen wurden mit AB5894, im Verhältnis von 1:500 mit demselben Puffer verdünnt, über Nacht bei 2–8 °C inkubiert. Die Membranen wurden gespült und mit HRP-konjugiertem sekundärem Antikörper 1 Stunde bei Raumtemperatur inkubiert. Nach dem Spülen wurden die Membranen mittels erweiterter Chemilumineszenz verarbeitet.
Physikalische Form
Serum. Flüssig. Enthält 0,05 % Natriumazid.
Lagerung und Haltbarkeit
Kann bei -20 °C in unverdünnten Aliquoten bis zu 6 Monate aufbewahrt werden. Wiederholte Einfrier-/Auftauzyklen vermeiden.
Rechtliche Hinweise
CHEMICON is a registered trademark of Merck KGaA, Darmstadt, Germany
Haftungsausschluss
Sofern in unserem Katalog oder anderen Begleitdokumenten unserer Produkte nicht anders angegeben, sind unsere Produkte nur für Forschungszwecke vorgesehen und nicht für andere Zwecke zu verwenden, einschließlich, jedoch nicht beschränkt auf unautorisierte kommerzielle Verwendung, zur In-vitro-Diagnostik, für Ex-vivo- oder In-vivo-Therapiezwecke oder jegliche Art der Einnahme oder Anwendung bei Menschen oder Tieren.
Sie haben nicht das passende Produkt gefunden?
Probieren Sie unser Produkt-Auswahlhilfe. aus.
Lagerklassenschlüssel
10 - Combustible liquids
WGK
WGK 1
Analysenzertifikate (COA)
Suchen Sie nach Analysenzertifikate (COA), indem Sie die Lot-/Chargennummer des Produkts eingeben. Lot- und Chargennummern sind auf dem Produktetikett hinter den Wörtern ‘Lot’ oder ‘Batch’ (Lot oder Charge) zu finden.
Besitzen Sie dieses Produkt bereits?
In der Dokumentenbibliothek finden Sie die Dokumentation zu den Produkten, die Sie kürzlich erworben haben.
S E Mondello et al.
Experimental neurology, 335, 113480-113480 (2020-09-30)
To date, relatively few studies have used optogenetic stimulation to address basic science and therapeutic questions within the spinal cord. Even less have reported optogenetic stimulation in the rat spinal cord. This is likely due to a lack of accessible
Z-J Wang et al.
Anatomy and embryology, 207(4-5), 363-371 (2003-11-19)
Intraganglionic laminar endings (IGLEs) represent the most prominent vagal afferent terminal structures throughout the gastrointestinal tract. They are most prominent in the esophagus and stomach, but can be found down to the distal colon. Their role as mechanosensors as proposed
Unser Team von Wissenschaftlern verfügt über Erfahrung in allen Forschungsbereichen einschließlich Life Science, Materialwissenschaften, chemischer Synthese, Chromatographie, Analytik und vielen mehr..
Setzen Sie sich mit dem technischen Dienst in Verbindung.